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慢病毒载体的包装与纯化
1实验流程
制备慢病毒穿梭质粒及其辅助包装原件载体质粒,四种质粒载体分别进行高纯度无内毒素抽提,共转染293T细胞,转染后8 h 更换为完全培养基,培养48h后,收集富含慢病毒颗粒的细胞上清液,对其浓缩后得到高滴度的慢病毒浓缩液,感染Hela细胞后定量PCR检测病毒滴度。体内和体外实验对慢病毒滴度的要求不同,生产过程中可以通过浓缩得到不同滴度的慢病毒颗粒。
2实验材料
2.1慢病毒载体、包装细胞和菌株
慢病毒载体系统该病毒包装系统为四质粒系统,组成为pRsv-REV, pMDlg-pRRE,pMD2G, 目的干扰质粒。其中目的干扰质粒能表达绿色荧光蛋白(GFP). pRsv-REV, pMDlg-pRRE,pMD2G含有病毒包装所必须的元件.
细胞株 293T,慢病毒的包装细胞,为贴壁依赖型成上皮样细胞,生长培养基为DMEM(含10% FBS)。贴壁细胞经培养生长增殖形成单层细胞。
菌株 大肠杆菌菌株DH5α。用于扩增慢病毒载体和辅助包装载体质粒。
3慢病毒载体系统质粒基本信息和图谱
该病毒包装系统为四质粒系统,组成为pRsv-REV, pMDlg-pRRE,pMD2G, 目的穿梭质粒。其中穿梭质粒(目的穿梭质粒)含有能表达绿色荧光蛋白(GFP);pRsv-REV, pMDlg-pRRE,pMD2G含有病毒包装所必须的元件。
3.1穿梭质粒:目的穿梭质粒
3.2pRsv-REV
3.3pMDlg-pRRE
3.4pMD2G
4慢病毒生产实验步骤
4.1慢病毒包装细胞转染用胰蛋白酶消化对数生长期的293 T细胞,细胞密度为0.5×10时;重新接种于25 mL的15cm细胞培养皿,37℃,50 mL/L CO2培养箱内培养;
4.2制备慢病毒包装系统中四种质粒DNA溶液;
pRsv-REV 10 μg,
pMDlg-pRRE 15 μg,
pMD2G 7.5 μg,
干扰质粒 20 ug
加入无菌水定容至1800 μL, 再加入CaCl2 (2.5 mol/L) 溶液200 μL,混匀,加入2×BBS缓冲盐溶液2000 μL,室温放置20~30 min;
4.3 当细胞密度达60%~70%时转染. 将DNA和磷酸钙混合液转移至含单层细胞的培养液中,混匀,培养12 h后弃去含有转染混和物的培养液,加入PBS 15 mL,轻摇后弃去,重复该步骤3次.;
4.4每瓶细胞中加入含100 mL/L小牛血清的细胞培养液15 mL,继续培养48 h.;
4.5收集转染72 h的293T细胞上清液;
4.6将收集的上清液于4℃,4000 g离心10 min,收集上清液;
4.7将各种不同RNA干扰质粒上清液以0.45 μm滤器过滤;
4.8于40 mL超速离心管中,4℃,25000 r/min离心20 min;
4.9而后以冰PBS液,分别溶于500ul Dmem,和500ul PBS重旋病毒沉淀于4℃溶解过夜
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